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Identificación de especies: larvas transmitidas por el agua, Texas, EE. UU.

Identificación de especies: larvas transmitidas por el agua, Texas, EE. UU.



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¿Puedes ayudar a identificar este gusano?

Se encontró en un vaso de agua en un restaurante (desagradable, sí), probablemente vino a través del sistema de agua. (Ubicación: Texas) Encontré estas imágenes en línea (en las que también se encontraron en sistemas de agua: cuenco para perros, fregadero), pero ninguno de los sitios lo identificó.

Rasgos significativos: cabeza negra, cola puntiaguda negra, cuerpo claro con intestinos grisáceos visibles, diminuto (2-3 mm)

Larvas similares que no coinciden: -Larvas de mosquito -Larvas de mosquito

Se agradece cualquier información, incluso si está familiarizado con larvas de aspecto similar. Gracias.


Las larvas son moscas polilla (Psychoda sp.)

La cabeza negra, la cola negra puntiaguda, el cuerpo claro con intestinos grisáceos visibles y también su pequeño tamaño 2-3 mm se puede ver en ambas imágenes.

Dónde se pueden encontrar en la naturaleza:

En la naturaleza, las larvas de la mosca polilla, Psychoda sp. (Diptera: Psychodidae) normalmente se encuentran en hábitats acuáticos que experimentan inmersiones o inundaciones intermitentes. Las larvas se desarrollan en aguas poco profundas contaminadas o en sólidos orgánicos muy húmedos donde se alimentan de material orgánico en descomposición en el barro, el musgo o el agua.

Dónde se pueden encontrar en los hogares:

En los hogares, las moscas adultas, que se asemejan a pequeñas polillas, se encuentran probablemente en las paredes de los baños, cocinas, sótanos y otros lugares donde se encuentran los desagües de alcantarillado y los accesorios de plomería. Las moscas vuelan mal y generalmente se encuentran cerca del desagüe o del área de donde provienen. Se sabe que las larvas de la mosca polilla viven en trampas de drenaje, trituradores de basura, tanques de inodoros, lados de tuberías de desagüe y tuberías de desbordamiento en hogares, áreas húmedas alrededor de tuberías con fugas, líneas de alcantarillado y fosas sépticas donde se alimentan de cosas que podrían acumularse en dichas áreas. . Las moscas polilla que viven en Michigan no pican y no se sabe que transmitan enfermedades de ningún tipo.

Qué hacer contra ellos:

La mejor manera de controlar las moscas de la polilla es eliminar o reducir las fuentes de alimento de las larvas limpiando a fondo las líneas de drenaje y los accesorios de plomería. Verter agua hirviendo por el desagüe donde se sospecha que están las larvas puede ayudar a reducir su número. Los adultos pueden controlarse con la aplicación de un insecticida en aerosol doméstico (como Raid) o un buen matamoscas. Asegúrese de leer y seguir todas las instrucciones y precauciones de seguridad que se encuentran en la etiqueta antes.

Hay varios otros métodos que son mucho más precisos y enumeran cómo eliminar las moscas de la polilla de los desagües.


Estas son las larvas de la mosca polilla (Psychodidae). Viven en lavabos, bañeras, etc. Ver http://bugguide.net/node/view/201443/bgimage


Hormiga faraón

Descripción para adultos: También conocida como la hormiga de azúcar, la hormiga faraón Monomorium pharaonis tiene un cuerpo pequeño que varía de 1/12 a 1/16 de pulgada de largo (2 mm). Las obreras son de tamaño monomórfico con coloración corporal que varía de amarillo dorado a marrón rojizo, y tienen una vida útil de aproximadamente 70 días. Los machos reproductores son del mismo tamaño que las obreras, pero son de color negro y rara vez se encuentran en el nido. Las reinas miden 4 mm de largo y son un poco más oscuras que las obreras. Las reinas pueden vivir un año y poner hasta 35 huevos por día.

Descripción de la larva: Típica larva de hormiga. Los trabajadores se desarrollan de huevo a adulto en 36 días. Los machos y hembras alados necesitan unos 44 días para desarrollarse.

Planta huésped: Ninguno


Identificación de especies basada en PCR de larvas de Agriotes

Las larvas del escarabajo clic dentro del género Agriotes (Coleoptera: Elateridae), comúnmente conocidas como gusanos de alambre, son abundantes herbívoros que viven en el suelo y pueden infligir daños considerables a los cultivos de campo. En Europa Central se encuentran hasta 20 especies, que difieren en su distribución, ecología y estado de plaga, en tierras cultivables. Sin embargo, la identificación de estas larvas basada en caracteres morfológicos es difícil o imposible. Esto dificulta el avance hacia el control de estas plagas. Aquí, presentamos un enfoque basado en la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) para identificar, por primera vez, 17 especies de Agriotes que se encuentran típicamente en Europa Central. La información de la secuencia de diagnóstico se generó y se envió a GenBank, lo que permitió la identificación de estas especies a través de códigos de barras de ADN. Además, se desarrollaron ensayos de PCR multiplex para identificar las nueve especies más abundantes rápidamente dentro de una reacción de un solo paso: Agriotes brevis, A. litigiosus, A. obscurus, A. rufipalpis, A. sordidus, A. sputator, A. ustulatus, A . lineatus y A. proximus. Las dos últimas especies siguen siendo molecularmente indistinguibles, lo que cuestiona el estado de su especie. Los ensayos de PCR multiplex demostraron ser muy específicos contra escarabajos elateridos no agrícolas y otros invertebrados del suelo no objetivo. Al probar el sistema de identificación molecular con más de 900 larvas recolectadas en el campo, nuestro protocolo demostró ser un método confiable, barato y rápido para identificar de forma rutinaria las especies de Agriotes de Europa Central.


Lipancylus

Tribu Baridini

Trichobaris

Tribu Madarini

Odontocorynus

Onychobaris

Tribu Apostasimerini

Apinocis

Geraeus

Linogeraeus

Stethobaris


Daño

Los árboles muertos y la maleza proporcionan una fuente de alimento natural para buscar termitas subterráneas. Cuando se despeja la vegetación natural y se construyen las casas, las termitas a menudo cambian para alimentarse de estructuras de madera. Las termitas ingresan a los edificios a través de la madera que está en contacto directo con el suelo y al construir tubos de refugio sobre o a través de grietas en los cimientos. Cualquier material de celulosa en contacto directo con el suelo, como árboles, enredaderas o accesorios de plomería, puede servir como una vía de infestación.

Señales de infestación

Las infestaciones activas de termitas pueden ser difíciles de detectar. Para saber si una casa está infestada, se debe revisar la estructura en busca de evidencia de enjambres (incluidas alas o termitas muertas en las ventanas), tubos de barro o madera dañada dentro o alrededor de una estructura.

Enjambres: Generalmente, el primer signo de infestación que notan los propietarios de viviendas es el enjambre de reproductores en los alféizares de las ventanas o cerca de las luces interiores. El enjambre de termitas dentro de la casa generalmente indica una infestación activa en la estructura. Las alas de las termitas se pueden encontrar en los alféizares de las ventanas o pegadas a las telarañas en el interior. Aunque los enjambres al aire libre son un fenómeno natural, indican que las termitas están presentes y pueden estar atacando estructuras cercanas.

Tubos de barro: Los tubos de refugio de barro en los muelles de los espacios de arrastre, las penetraciones de servicios públicos o en las paredes y losas de los cimientos son un signo de infestación de termitas. Los tubos de refugio de termitas pueden mezclarse bien con el suelo o el concreto, lo que los hace difíciles de ver. Para facilitar la inspección de la casa en busca de termitas, pode la vegetación lejos de las paredes de la casa. La línea del suelo debe estar varias pulgadas por debajo de la parte superior de las losas o muros de cimentación. Un inspector debe buscar cuidadosamente los tubos de lodo a lo largo de las grietas, en las esquinas o donde la parte superior de la base está cerca del suelo. Un destornillador es útil para romper tubos de termitas sospechosos y detectar termitas vivas.

El daño de la madera a menudo no se encuentra inicialmente, pero es un indicio positivo de una infestación de termitas actual o pasada. Dondequiera que la madera entre en contacto con el suelo, existe un alto riesgo de entrada de termitas. Examine cuidadosamente cualquier madera que suene sorda o sorda cuando se golpea con un destornillador o un martillo. Sondear las áreas sospechosas con un instrumento afilado, como un destornillador o un picahielo, a menudo revelará galerías de termitas o daños.

Características de la madera dañada

El daño de las termitas subterráneas generalmente se limita al suave crecimiento primaveral de la madera. Los túneles y galerías de termitas tienden a seguir la veta de la madera y están revestidos de barro o pueden tener una apariencia pálida y manchada como resultado de material fecal suave enyesado en las superficies de los túneles. Las fuentes de humedad pueden provocar la descomposición de la madera y fomentar la infestación de termitas subterráneas. El deterioro causado por los hongos destructores de la madera se puede confundir con el daño causado por las termitas.


Referencias

Bentley, W.J. y M. Viveros. 1992. El empaquetado de manzanas Granny Smith en bolsas marrones en los árboles detiene el daño de la polilla de la manzana. Agricultura de California. 46 (4): 30-32.

Brown, J. W. 2006. Nombres científicos de especies de plagas en Tortricidae (Lepidoptera) frecuentemente citados erróneamente en la literatura entomológica. Entomólogo estadounidense. 52: 182-189.

Gilligan, T. M., D. J. Wright y L. D. Gibson. 2008. Polillas olethreutine del medio oeste de Estados Unidos, una guía de identificación. Estudio biológico de Ohio, Columbus, Ohio. 334 págs.


Identificación de especies: larvas transmitidas por el agua, Texas, EE. UU. - Biología

El gusano de los cogollos del tabaco, Heliothis virescens (Fabricius), es una especie nativa y se encuentra en todo el este y suroeste de los Estados Unidos, aunque también se conoce en California. Por lo general, pasa el invierno con éxito solo en los estados del sur. Sin embargo, ocasionalmente sobrevive a climas fríos en invernaderos y otros lugares protegidos. El gusano de los cogollos del tabaco se dispersa hacia el norte anualmente y se puede encontrar en Nueva Inglaterra, Nueva York y el sur de Canadá a fines del verano. También se presenta ampliamente en el Caribe y esporádicamente en América Central y del Sur.

Figura 1. Un primer plano de un gusano de los cogollos del tabaco adulto, Heliothis virescens (Fabricio). Fotografía de Andrei Sourakov, Museo de Historia Natural de Florida.

Ciclo de vida y descripción (volver al principio)

Las polillas emergen de marzo a mayo en los estados del sur, seguidas de cuatro a cinco generaciones durante el verano, y la hibernación comienza de septiembre a noviembre. Se han reportado cuatro generaciones del norte de Florida y Carolina del Norte, y al menos cinco de Louisiana. Se han recolectado polillas en Nueva York de julio a septiembre, pero en latitudes tan septentrionales no se considera una plaga. Esta especie pasa el invierno en la etapa de pupa.

Huevos: Los huevos se depositan en flores, frutos y crecimiento terminal. Los huevos son esféricos, con una base aplanada. Miden de 0,51 a 0,60 mm de ancho y de 0,50 a 0,61 mm de alto. Los huevos inicialmente son de color blanquecino a blanco amarillento, pero se vuelven grises a medida que envejecen. Las crestas estrechas irradian desde la punta del huevo, y su número es de 18 a 25. Los huevos del gusano cogollero del tabaco son casi indistinguibles de los del gusano cogollero del maíz, Heliocoverpa zea. Sin embargo, con un gran aumento, se puede observar que las costillas primarias de los huevos del gusano de las yemas del tabaco terminan antes de que alcancen la roseta de células que rodean el micropilo en el gusano del maíz, al menos algunas costillas primarias se extienden hasta la roseta. Las hembras normalmente producen de 300 a 500 huevos, pero se han informado de 1000 a 1500 huevos por hembra a partir de larvas cultivadas con dieta artificial a temperaturas frescas.

Larvas: Las larvas del gusano de los cogollos del tabaco tienen de cinco a siete estadios, siendo cinco o seis los más comunes. Los anchos de la cápsula de la cabeza para las larvas que se desarrollan a través de cinco estadios miden 0.26-0.31, 0.46-0.54, 0.92-0.99, 1.55-1.72, 2.38-2.87 mm para los estadios uno a cinco, respectivamente. Las longitudes de las larvas son 1.1-4.0, 4.2-8.0, 8.7-14.7, 18.5-25.6 y 23.3-35.6 mm para estos mismos estadios. Los anchos de la cápsula de la cabeza para las larvas que se desarrollan a través de seis estadios miden 0.26-0.31, 0.36-0.53, 0.72-0.85, 1.12-1.25, 1.60-1.72 y 2.40-2.82 mm para los estadios uno a seis, respectivamente. Las longitudes de las larvas son 1.4-4.1, 3.0-7.0, 7.5-9.2, 12.0-15.8, 19.5-24.3 y 25.5-36.0 mm para estos mismos estadios.

El tiempo de desarrollo fue estudiado por Fye y McAda (1972) a diversas temperaturas. Cuando se cultivó a 20 ° C, el desarrollo requirió aproximadamente 4,6, 2,6, 3,1, 3,7, 10,1 y 9,8 días para los estadios uno a seis, respectivamente. A 25 ° C, los tiempos de desarrollo larvario fueron 3,1, 2,0, 1,9, 2,1, 5,7 y 2,5 días, respectivamente.

Las larvas jóvenes son de color amarillento o verde amarillento con una cápsula de cabeza marrón amarillenta. Los estadios posteriores son verdosos con bandas blanquecinas dorsales y laterales, y con una cápsula de la cabeza marrón. Muchas de las bandas pueden ser estrechas o incompletas, pero una banda subespiracular lateral ancha suele ser pronunciada. El color del cuerpo es variable, ya veces se encuentran formas de color verde pálido o rosado, o formas de color rojizo oscuro o granate. Las larvas son muy similares al gusano cogollero del maíz. Como es el caso del gusano cogollero del maíz, el cuerpo presenta numerosas microespinas negras con forma de espinas. Estas espinas le dan al cuerpo una sensación áspera cuando se tocan.

Figura 2. Larva del gusano de los cogollos del tabaco, Heliothis virescens (Fabricio). Fotografía de John Capinera, Universidad de Florida.

Los estadios tempranos son difíciles de separar del gusano cogollero del maíz. Neunzig (1964) da características distintivas. A partir del tercer estadio, un examen minucioso revela tubérculos con pequeñas microespinas en forma de espinas en el primer, segundo y octavo segmentos abdominales que tienen aproximadamente la mitad de la altura de los tubérculos. En el gusano del maíz, las microespinas de los tubérculos están ausentes o llegan hasta un cuarto de la altura del tubérculo. Las larvas exhiben un comportamiento caníbal a partir del tercer o cuarto estadio, pero no son tan agresivas como el gusano del maíz.

Figura 3. Tubérculo del gusano de la yema del tabaco con microespinas.

Figura 4. Tubérculo del gusano del maíz con microespinas.

Crisálida: La pupación ocurre en el suelo. Las pupas son de color marrón rojizo brillante, volviéndose marrón oscuro antes de la emergencia del adulto. La pupa tiene un promedio de 18,2 mm de largo y 4,7 mm de ancho. Se informa que la duración de la etapa de pupa es de aproximadamente 22 días a 20 ° C, 13,0 días a 25 ° C y 11,2 días a 30 ° C. La diapausa se inicia por las bajas temperaturas o la corta duración del día.

Adultos: Las polillas son de color marrón y ligeramente teñidas de verde. Las alas delanteras están cruzadas transversalmente por tres bandas oscuras, cada una de las cuales suele ir acompañada de un borde blanquecino o de color crema. Las hembras tienden a ser de color más oscuro. Las alas traseras son blanquecinas, con el margen distal con una banda oscura. Las polillas miden de 28 a 35 mm de envergadura. El período de preoviposición de las hembras dura aproximadamente dos días. Se informa que la longevidad de las polillas varía desde 25 días cuando se mantienen a 20 ° C, hasta 15 días a 30 ° C. Se ha identificado una feromona sexual (Tumlinson et al. 1975).

Figura 5. Un gusano de los cogollos del tabaco adulto, Heliothis virescens (Fabricio). Fotografía de Andrei Sourakov, Museo de Historia Natural de Florida.

La biología del gusano de los cogollos del tabaco está dada por Neunzig (1969) y Brazzel et al. (1953). La larva está incluida en claves por Okumura (1962) y Oliver y Chapin (1981), esta última publicación también describe la etapa adulta.

Plantas hospedantes (volver arriba)

El gusano de las yemas del tabaco es principalmente una plaga de cultivos de campo, que ataca cultivos como alfalfa, trébol, algodón, lino, soja y tabaco. Sin embargo, a veces ataca vegetales como el repollo, melón, lechuga, guisante, pimiento, gandul, calabaza y tomate, especialmente cuando el algodón u otros cultivos favorecidos son abundantes. El gusano de los cogollos del tabaco es una plaga común del geranio y otros cultivos de flores como el ageratum, ave del paraíso, crisantemo, gardenia, geranio, petunia, malva, caléndula, petunia, boca de dragón, flor de paja, verbena y zinnia.

Las malezas que sirven como hospedadores de larvas incluyen lengua de barba, Penstemon laevigatus beggarweed, Desmodium spp. lespedeza bicolor, Lespedeza bicolor medico negro, Medicago lupulina geranio, Geranio disectum pasto de ciervo Rexia spp. muelle, Rumex spp., Groundcherry, Physalis spp. Madreselva japonesa, Lonicera japonica lupino, Lupino spp. gloria de la mañana, Ipomoea spp. una gloria de la mañana, Jacquemontia tamnifolia pasionaria, Passiflora sp. sida espinosa, Sida spinosa girasol, Helianthus spp. linaza de sapo Linaria canadensis y pan de terciopelo, Abutilon theophrasti. En Georgia, el gusano de los cogollos del tabaco se desarrolló principalmente en la linaza sapo durante abril y mayo durante una o dos generaciones, seguido de una generación en la hierba de ciervo durante junio y julio y de dos a tres generaciones en la hierba beggarweed de julio a octubre. En Mississippi, la cranesbill fue identificada como la planta hospedante clave al comienzo de la temporada. En el sur de Texas, el algodón es el hospedador principal, pero malezas como el tabaco silvestre, Nicotania repanda verbena, Verbena neomexicana ruellia, Ruellia runyonii y malva, Aubitilon trisulcatum, son hospedadores importantes a principios o finales del año.

En las pruebas en jaulas y los estudios de campo realizados en Florida y que no incluyeron el algodón, el tabaco fue más preferido que otros cultivos y hortalizas, pero se atacaron el repollo, la berza, el quimbombó y el tomate (Martin et al. 1976).

Daño (volver arriba)

Las larvas perforan las yemas y las flores (la base del nombre común de este insecto) y, a veces, el tierno crecimiento foliar terminal, los pecíolos de las hojas y los tallos. En ausencia de tejido reproductivo, las larvas se alimentan fácilmente del tejido foliar. Neunzig (1969), infectó el tabaco tanto con el gusano del cogollo del tabaco como con el gusano del maíz, y observó patrones y niveles de daño muy similares por parte de estas especies estrechamente relacionadas. La entrada de larvas en la fruta aumenta la frecuencia de enfermedades de las plantas. Las investigaciones en los campos de tomates del sur de Arkansas indicaron que, aunque el gusano de las yemas del tabaco estuvo presente de mayo a julio, no fueron tan abundantes ni tan dañinos como el gusano del maíz (Roltsch y Mayse 1984).

Enemigos naturales (volver arriba)

Se ha observado que numerosos depredadores generales se alimentan del gusano de los cogollos del tabaco. Entre los más comunes se encuentran Polistes spp. avispas (Hymenoptera: Vespidae) patudo, Geocoris punctipes (Diga) (Hemiptera: Lygaeidae) chinches damisela, Nabis spp. (Hemiptera: Nabidae) diminutos bichos piratas, Orius spp. (Hemiptera: Anthocoridae) y arañas.

También se han observado varios parasitoides y se han informado altos niveles de parasitismo. El parasitoide del huevo Trichogramma pretiosum Riley (Hymenoptera: Trichogrammatidae) puede ser eficaz en cultivos de hortalizas. Otros parasitoides importantes son Cardiochiles nigriceps Viereck en verduras y Cotesia marginiventris (Cresson) en otros cultivos (ambos Hymenoptera: Braconidae). La eficacia de los parasitoides varía entre cultivos. Otras especies conocidas del gusano de los cogollos del tabaco incluyen Archytas marmoratus (Townsend) (Diptera: Tachinidae) Meteorus autographae Muesebeck (himenópteros: Braconidae)Campoletis flavicincta (Ashmead), C. perdistinctus (Viereck), C. sonorensis (Cameron), Netelia sayi (Cushman) y Pristomerus spinator (Fabricius) (todos los himenópteros: Ichneumonidae).

Figura 6. El parasitoide de la avispa Cardiochiles nigriceps Viereck, se acerca a un huésped potencial, una larva del gusano del tabaco, Heliothis virescens (Fabricio). Fotografía de Andrei Sourakov, Museo de Historia Natural de Florida.

Figura 7. El parasitoide de la avispa Cardiochiles nigriceps Viereck, picando una larva de gusano del tabaco, Heliothis virescens (Fabricio). Fotografía de Andrei Sourakov, Museo de Historia Natural de Florida.

Se sabe que los patógenos causan mortalidad. Entre los patógenos conocidos se encuentran los microsporidios, Nosema spp., hongos como Spicaria rileyiy virus de poliedrosis nuclear. En un estudio realizado en Carolina del Sur, Espicaria el hongo era un agente de mortalidad más importante que la incidencia natural de virus y se consideraba uno de los agentes de mortalidad natural más importantes.

Gestión (volver al principio)

Muestreo. Las trampas de alambre grandes en forma de cono cebadas con señuelos de feromonas sexuales se utilizan comúnmente para capturar polillas del gusano de los cogollos del tabaco. Las trampas de cubeta más pequeñas pueden capturar estas polillas, pero no son muy eficientes.

Insecticidas. Los insecticidas foliares se utilizan comúnmente en cultivos donde es probable que se produzcan daños por gusanos del tabaco. Sin embargo, a menudo se produce la destrucción de organismos beneficiosos, y se cree que esto agrava el daño del gusano de las yemas. Además, la resistencia a los insecticidas está muy extendida, particularmente en cultivos donde el uso de piretroides es frecuente.

Técnicas culturales. La destrucción de las malezas al inicio de la temporada con herbicida o la siega, o la destrucción de las larvas de las malezas mediante el tratamiento con insecticidas, puede reducir el tamaño de la población de gusanos del tabaco más adelante en el año.

Control biológico. El insecticida microbiano bacilo turingiensico es eficaz contra el gusano de las yemas. Heliothis El virus de la poliedrosis nuclear se ha utilizado eficazmente para suprimir el gusano de los cogollos del tabaco en cultivos de campo y en malezas hospedantes de principios de temporada. El gusano de los cogollos del tabaco también es susceptible al virus de la poliedrosis nuclear de la alfalfa looper, Autographa californica (Speyer). Liberarse de Trichogramma Se ha demostrado que los parasitoides del huevo son beneficiosos en algunos cultivos de hortalizas (Martin et al. 1976).

Resistencia de la planta hospedante. Aunque hay poca evidencia de resistencia natural al gusano de los cogollos del tabaco en muchos cultivos, el algodón está siendo modificado genéticamente para expresar resistencia. La mayor resistencia del algodón a la supervivencia de las larvas debería resultar en una menor presión de los insectos sobre los cultivos de hortalizas cercanos.

Referencias seleccionadas (volver al principio)

  • Brazzel JR, Newsom LD, Roussel JS, Lincoln C, Williams FJ, Barnes G. 1953. Gusano de la cápsula y gusano de los cogollos del tabaco como plagas del algodón en Luisiana y Arkansas. Boletín técnico 482 de la Estación Experimental Agrícola de Luisiana. 47 págs.
  • Fye RE, McAda WC. 1972. Estudios de laboratorio sobre el desarrollo, longevidad y fecundidad de seis plagas lepidópteros del algodón en Arizona. Boletín técnico 1454 del Departamento de Agricultura de EE. UU. 73 págs.
  • Martin PB, Lingren PD, Greene GL. 1976. Abundancia relativa y preferencias de hospedante de la garra de la col, la garra de la soja, el gusano de las yemas del tabaco y el gusano del maíz en cultivos que se cultivan en el norte de Florida. Entomología ambiental 5: 878-882.
  • Martin PB, Lingren PD, Greene GL, Ridgway RL. 1976. Parasitización de dos especies de Plusiinae y Heliothis spp. después de lanzamientos de Trichogramma pretiosum en siete cosechas. Entomología ambiental 5: 991-995.
  • Neunzig HH. 1964. Los huevos y larvas de estadio temprano de Heliothis zea y Heliothis virescens (Lepidoptera: Noctuidae). Annals of the Entomological Society of America 57: 98-102.
  • Neunzig HH. 1969. La biología del gusano cogollero del tabaco y el gusano cogollero del maíz en Carolina del Norte con especial referencia al tabaco como hospedador. Boletín técnico 196 de la estación experimental agrícola de Carolina del Norte. 76 págs.
  • Okumura GT. 1962. Identificación de larvas lepidópteros que atacan al algodón con clave ilustrada (principalmente especies de California). Departamento de Agricultura de California, Oficina de Entomología, Publicación especial 282. 80 págs.
  • Oliver AD, Chapin JB. 1981. Biología y clave ilustrada para la identificación de veinte especies de plagas de noctuidos de importancia económica. Boletín 733 de la Estación Experimental Agrícola de Louisiana. 26 págs.
  • Roltsch WJ, Mayse MA. 1984. Estudios de población de Heliothis spp. (Lepidoptera: Noctuidae) en tomate y maíz en el sureste de Arkansas. Entomología ambiental 13: 292-299.
  • Tumlinson JH, Hendricks DE, Mitchell ER, Doolittle RE, Brennan MM. 1975. Aislamiento, identificación y síntesis de la feromona sexual del gusano del cogollo del tabaco. Revista de Ecología Química 1: 203-214.

Autor: John L. Capinera, Departamento de Entomología y Nematología, Universidad de Florida
Fotografías: John L. Capinera, Departamento de Entomología y Nematología, Universidad de Florida, y Andrei Sourakov, Museo de Historia Natural de Florida
Diseño web: Don Wasik, Jane Medley
Número de publicación: EENY-219
Fecha de publicación: julio de 2001. Última revisión: diciembre de 2018.


IPM horizontal

El pequeño tejido de seda que se asemeja a un adorno de árbol de Navidad en su árbol o arbusto favorito no es una decoración. Estas bolsas protegen a las orugas, o larvas, pupas, hembras adultas y huevos de gusanos de bolsa (Orden Lepidoptera Family Psychidae, Fig. 1).

Los gusanos de bolsa atacan árboles y arbustos, incluidos árboles de hoja perenne como arborvitae, cedros, cipreses, enebros, pinos y abetos y plantas de hoja ancha como manzano, tilo, langosta negra, boj, olmo, langosta, espino indio, arce, varios robles, caqui, zumaque , sicomoro, cerezo silvestre y sauce.

Aunque los gusanos de bolsa no abundan todos los años, una vez que una planta está infestada, el insecto se convierte en un problema persistente a menos que se controle. Texas tiene varias especies de gusanos de bolsa, que incluyen Astala edwardsi, A. confederado, Tyridopteryx meadi, T. ephemeraeformis, Cryptothelea gloveri, Oiketicus abbotii y O. townsendi.

Los hábitos y ciclos de vida ligeramente diferentes de cada especie afectan el momento de las medidas de control. Las infestaciones, que pueden pasar desapercibidas al principio, pueden deshojar árboles y arbustos y matar estas plantas si no se controlan.

El gusano de la bolsa Thyridopteryx ephemeraeformis) que se encuentra en la mayoría de los árboles de hoja perenne vive en el centro-este de Texas, desde la frontera del estado de Oklahoma hasta la costa del Golfo. Cada especie tiene una generación por año. Los huevos se ponen en otoño y eclosionan en primavera. Las orugas crecen durante todo el verano y pupan en agosto o septiembre. Después de un período de pupa de 3 semanas, emergen las polillas adultas. Después del apareamiento, las hembras depositan sus huevos y mueren.

Fig. 1. Gusano de bolsa (foto de H.A. Turney)

El gusano de la bolsa del roble vivo (O. abbotii) es abundante en la parte centro-sur del estado, a lo largo de la costa del Golfo hasta la frontera del estado de Luisiana. Las orugas se pueden encontrar durante la primavera y el verano. La mayoría de las polillas emergen en abril y mayo, pero algunas aparecen hasta octubre. Las larvas pueden hibernar durante el invierno y reanudar la alimentación en la primavera antes de la pupa. Los huevos hibernados pueden incubar ya en febrero. Una especie de gusano de la bolsa del desierto (O. townsendi) se encuentra desde El Paso hasta Alpine y en el área Trans-Pecos de Texas. Estos gusanos de bolsa suelen pasar el invierno como larvas grandes, que se alimentan un poco en la primavera antes de pupar en abril o mayo. Las polillas emergen de abril a lo largo
el verano. Su crecimiento y cambios de vida están influenciados por las lluvias y la estación.

Biología y hábitos

La característica más fácil de identificar de los gusanos de bolsa es el estuche de seda resistente, portátil que construyen para vivir. La textura sedosa de la bolsa está oculta y reforzada por capas de hojas, ramitas y fragmentos de corteza dispuestos en forma de tejas o transversales. Diferentes especies usan diferentes materiales vegetales para hacer sus bolsas. El gusano expulsa la basura a través de una pequeña abertura en el extremo inferior estrecho de la bolsa y usa una abertura más ancha en la parte superior como una puerta para arrastrarse hacia afuera para alimentar o reparar su bolsa.

Las orugas de gusano de bolsa recién nacidas miden aproximadamente 1/25 de pulgada de largo (Fig. 2). A medida que las larvas eclosionan, hilan hilos individuales de seda y se adhieren a ramas o plantas adyacentes, donde comienzan a construir sus propias bolsas de seda y las llevan en posición vertical mientras se mueven.

Las larvas jóvenes que flotan en el hilo de seda pueden propagar la infestación a nuevas plantas hospedantes.
A medida que las orugas crecen, las bolsas se alargan más. En la madurez, las orugas pueden medir de 3/4 a 1 pulgada de largo, las bolsas que cuelgan de las plantas miden de 1-3 / 4 a 2 pulgadas de largo y más de 1/2 pulgada de ancho. La mayoría de las especies llevan sus bolsas a lo largo de ramitas y follaje con sus patas o con un hilo de seda adjunto. Una larva cierra la abertura superior de su bolsa antes de cada una de las mudas entre las etapas de desarrollo y antes de la hibernación invernal.
o pupación.

Fig. 3. Polillas del gusano de la bolsa machos alrededor de la bolsa en la que emergió la piel de la pupa macho

Los adultos emergen después de la etapa de pupa. El macho adulto, que se asemeja a una pequeña polilla (Fig. 3), es de color negro como el hollín, y tiene alas claras con un lapso de 1 pulgada y antenas plumosas. Los machos dejan sus bolsas por el extremo inferior y vuelan en busca de las hembras, dejando su piel de pupa sobresaliendo del fondo de la bolsa.

La hembra adulta parece un gusano, sin ojos, patas o antenas funcionales. Su cuerpo es suave y de color blanco amarillento. Las hembras sin alas emergen solo a la mitad y esperan para aparearse con los machos. Una vez apareada, la hembra adulta deposita de 400 a 1000 huevos en la caja de pupa vacía (Fig. 4) en su bolsa antes de caer al suelo y morir.

Control

Las aves, los insectos parásitos y los insectos depredadores son enemigos naturales de los gusanos de bolsa. La depredación de aves y el parasitismo de insectos pueden ayudar a mantener breves los brotes de gusanos de bolsa. Sin embargo, los enemigos naturales a menudo no pueden evitar que los gusanos de bolsa dañen las plantas.

Recoger a mano los gusanos de bolsa de las plantas es la forma más barata de controlarlos, especialmente en los meses de invierno. Recoja todas las bolsas y destrúyalas o deséchelas. Los huevos en bolsas arrojados al suelo eclosionarán en la primavera y se convertirán en larvas que podrían reinfectar las plantas.

Si la selección manual no es práctica o segura, use insecticida en aerosol. Aplique insecticida poco después de que los huevos del gusano de bolsa hayan eclosionado o mientras las larvas son pequeñas y se alimentan. Determine el momento adecuado para el tratamiento recolectando bolsas a fines del invierno y manteniéndolas en un recipiente fuera de la luz solar. Una vez que las orugas nazcan de las bolsas en el contenedor (Fig. 2), aplique insecticida a las plantas.

El control químico no es tan efectivo cuando las orugas cierran sus bolsas para mudar o pupar. En la mayoría de las áreas, los insecticidas aplicados en abril, mayo y junio son efectivos. Use insecticidas que contengan acefato (Orthene®), bacilo turingiensico var. Kurstaki, carbaril (Sevin®), piretroides (bifentrina, ciflutrina, cipermetrina, lambda-cihalotrina, permetrina, etc.), espinosad, azadiractina, aceite de neem, malatión, piretrinas o jabón insecticida. Use un equipo de rociado que cubra completamente todo el follaje. Contrata a un exterminador profesional si no cuentas con el equipo adecuado.

Recursos Relacionados

Uso de pesticidas

Todos los plaguicidas son potencialmente peligrosos para la salud humana y el medio ambiente. Los usuarios de pesticidas están obligados legalmente a leer y seguir cuidadosamente todas las instrucciones y precauciones de seguridad en la etiqueta del envase. Debido a que las instrucciones de la etiqueta están sujetas a cambios, lea la etiqueta cuidadosamente antes de comprar, usar y desechar cualquier pesticida.

Independientemente de la información proporcionada en una publicación de extensión, siga siempre la etiqueta del producto & # 8217s. En caso de duda acerca de las instrucciones, comuníquese con el vendedor de pesticidas o el fabricante que figura en la etiqueta para obtener una aclaración. Mantenga todos los pesticidas en sus envases originales etiquetados y almacenados fuera del alcance de los niños. Nunca vierta los pesticidas sobrantes por el desagüe.

Descargo de responsabilidad

La información de esta página es solo para fines educativos. La referencia a productos comerciales o nombres comerciales se hace con el entendimiento de que no se pretende discriminar y no se implica ningún respaldo por parte del Servicio de Extensión de Texas AgriLife.

Autor

Bastiaan M. Drees, profesor y entomólogo de extensión, The Texas A & ampM System

Expresiones de gratitud

Esta publicación es una revisión de L-1802, Bagworms, por Philip J. Hamman, ex entomólogo de Extensión. El autor agradece los comentarios de revisión de Carlos Bogran, John Jackman y Scott Ludwig.


Lobina negra (Micropterus salmoides)

La lobina negra crece de 4 a 6 pulgadas (10 a 15 cm) durante su primer año, de 8 a 12 pulgadas (20 a 30 cm) en dos años, 16 pulgadas (40 cm) en tres años. Suelen ser de color verde con manchas oscuras que forman una franja horizontal a lo largo del centro del pez a cada lado. La parte inferior varía en color de verde claro a casi blanco. Tienen una aleta dorsal casi dividida con la parte anterior que contiene nueve espinas y la parte posterior que contiene de 12 a 13 radios blandos. Su mandíbula superior llega mucho más allá del margen posterior del ojo. Ciclo de vida A excepción de los humanos, los adultos de lobina negra son los principales depredadores del ecosistema acuático. Los alevines se alimentan principalmente de zooplancton y larvas de insectos. Aproximadamente a dos pulgadas de largo se convierten en depredadores activos. Los adultos se alimentan casi exclusivamente de otros peces y grandes invertebrados como el cangrejo de río. Los peces más grandes se alimentan de lubinas más pequeñas.

En Texas, el desove comienza en la primavera cuando la temperatura del agua alcanza los 60 ° F. Esto podría ocurrir ya en febrero o hasta mayo, dependiendo de dónde se encuentre en el estado. Los machos construyen los nidos en dos a dos metros y medio de agua. La lobina negra prefiere anidar en aguas más tranquilas y con más vegetación que otras lubinas negras, pero utilizará cualquier sustrato además del barro blando, incluidos los troncos sumergidos. Al igual que en la lubina de Guadalupe, una vez que la hembra ha puesto huevos en el nido (2,000 a 43,000), el macho la ahuyenta y luego guarda los preciosos huevos. Las crías, llamadas alevines, nacen en cinco a diez días. Los alevines permanecen en un grupo o "escuela" cerca del nido y bajo la vigilancia del macho durante varios días después de la eclosión. Su vida útil es de 16 años en promedio.

La lobina negra inmadura puede tender a congregarse en las escuelas, pero los adultos suelen ser solitarios. A veces, varios lobinas se juntan en un área muy pequeña, pero no interactúan. La lobina negra se esconde entre plantas, raíces o ramas para golpear a sus presas. Hábitat La lobina negra busca coberturas protectoras como troncos, salientes de rocas, vegetación y estructuras hechas por el hombre. They prefer clear quiet water, but will survive quite well in a variety of habitats. Distribution Largemouth bass were originally distributed throughout most of what is now the United States east of the Rockies, including many rivers and lakes in Texas, with limited populations in southeastern Canada and northeastern Mexico. Because of its importance as a game fish, the species has been introduced into many other areas worldwide, including nearly all of Mexico and south into Central and South America. Other Two subspecies of largemouth bass exist in Texas: the native Micropterus salmoides salmoides and the Florida largemouth bass, Micropterus salmoides floridanus, which has been introduced into many Texas lakes. The largemouth bass is by far the most sought-after fish in Texas. When anglers were asked to "name the fish you prefer to catch in freshwater in Texas", they chose largemouth bass three to one over striped bass, four to one over white bass, nearly five to one over channel catfish, and nearly ten to one over flathead catfish and white crappie. Because of the strong interest in largemouth bass fishing, there are hundreds of bass angling clubs in Texas devoted to fishing and conservation. Bass fishing adds greatly to the Texas economy each year and largemouth bass are highly prized for their value as food. Because of the species' popularity, it has been introduced into many waters in which it did not originally occur. As with nearly all aquatic species, pollution and drought are the biggest threats to the largemouth bass population.


Entomologists, mosquito and vector control professionals, pest management professionals, biologists, environmentalists, veterinary scientists and practitioners, wildlife biologists/professionals, government regulators, instructors of medical entomology, health department and public health professionals who have disease or vector responsibilities, mosquito taxonomists at the Universities and Colleges throughout Texas, members of the Society of Southwestern Entomologists, members of the Texas Mosquito Control Association, USDA professionals, CDC professionals, epidemiologists, entomology students, academia, pest control industry, libraries, etc. The audience for this book will broadly include relevant medical, veterinary, and health professionals as well as biological, entomological, and life sciences personnel

Part I: Mosquitoes
1. Taxonomy, Identification, and Biology of Mosquitoes
2. Mosquito Species of Texas
3. Key to the Genera of Adult Female Mosquitoes of Texas
4. Key to the Genera and Fourth Stage Mosquito Larvae of Texas
5. Key to the Species of Adult Female Mosquitoes of Texas
6. Key to the Species of Fourth Stage Mosquito Larvae of Texas

Part II: Communities
7. Mosquito Surveillance
8. Mosquito Control
9. Mosquito Species of Neighboring States of Mexico
10. Invasive Mosquito Species and Potential Introductions

Part III: Public Health
11. Mosquito-Borne Diseases
12. Recent Expansion of Mosquito-Borne Pathogens into Texas
13. Functional Relationship Between Public Health and Mosquito Abatement
14. Vaccines for Mosquito-Borne Diseases Affecting Texas
15. Personal Protective Measures Against Mosquitoes


Ver el vídeo: Hay mucho trabajo en Texas y esto es lo que están pagando (Agosto 2022).